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透射電鏡樣本準備方法及要求

以下所有樣本必須新鮮，固定液或懸浮液都不得冷凍結冰！

1、 動物組織樣本

① 1-3min內取樣，取材前可提前準備裝有電鏡固定液的培養皿，將小組織塊離體取下后立即投入培養皿內，用手術刀在培養皿的固定液中進行切割成小塊，取樣組織體積控制在以下尺寸(1mmX1mm×1mm正方體、1mm×1mm×3mm長方體狀、1mm×2mm×3mm薄片狀)。固定液滲透能力有限，超出此范圍后組織會無法固定，后續實驗無法完成，務必請重視此過程

② 取材時盡量精確到需要觀察的目的部位（如觀察腎小球取腎皮質；觀察胰島取胰島豐富的胰尾；皮膚，腸胃等在固定液中易打卷的組織可將組織粘在濾紙上進行固定）。

③ 取材時一定注意避免鑷子擠壓等機械損傷，刀片要鋒利避免挫傷組織。

④ 組織取下后立即投入電鏡固定液內4度避光固定24h，再轉移至4°保存，4°冰袋運輸，在保存和運輸過程中樣本和冰袋需間隔，固定液切勿冷凍結冰。4°時樣本可保存1個月左右

2、 植物組織樣本

① 取材要求同動物組織樣本。

② 組織投入固定液后需要進行真空抽氣讓組織沉底，如無條件抽氣可用濾紙將組織塞進固定液內，組織不能漂浮在固定液表面。（抽氣做出來的效果會好一些）

3、 細胞樣本

貼壁細胞：

（看細胞凋亡的，需要把培養液中的細胞也離心收集后固定）

方法一：消化法（實驗目的不涉及觀察細胞膜相關的內容  如：觀察緊密連接）

①培養好的細胞（細胞密度不超過70%）棄培養基，加入胰酶消化。

②胰酶消化好后（時間不宜過長），加培養基終止消化，吸管輕輕吹打至細胞起浮。吸入離心管，低速離心（不超過3000轉），3-5min左右，離心后管底要有肉眼可見的細胞沉淀，厚度不要超過2毫米。

③棄上清，緩慢加入電鏡固定液（固定液需提前恢復至室溫）。加固定液過程中不要吹散細胞，如果吹散了需再次低速離心。

④4度避光固定24h，再轉移至4°保存，4°冰袋運輸，在保存和運輸過程中樣本和冰袋需間隔，固定液切勿冷凍結冰。

方法二：刮取法

①培養好的細胞（細胞密度不超過70%）棄培養基，加入電鏡固定液（固定液需提前恢復至室溫）。

②常溫避光固定5min左右，用細胞刮（或軟橡膠蓋切得平整小方塊）沿一個方向輕輕刮下細胞，切記不要反復刮，避免細胞刮破。

③用巴氏吸管把細胞液吸入離心管內，放入離心機（不超過3000轉），低速離心3-5min左右，離心后管底要有肉眼可見的細胞沉淀，厚度不要超過2毫米。

④棄上清，緩慢加入電鏡固定液（固定液需提前恢復至室溫）。緩慢加入固定液過程中不要吹散細胞，如果吹散了需再次低速離心。

⑤4度避光固定24h，再轉移至4°保存，4°冰袋運輸，在保存和運輸過程中樣本和冰袋需間隔，固定液切勿冷凍結冰。

懸浮細胞：離心收集細胞要肉眼可見細胞沉淀有綠豆大小，棄培養基后加電鏡固定液4度避光固定24h，再轉移至4°保存，4°冰袋運輸，在保存和運輸過程中樣本和冰袋需間隔，固定液切勿冷凍結冰。

4、 細菌樣本

長于固體培養基的細菌：連帶著培養基一起挑下細菌放于電鏡固定液內4度避光固定24h，再轉移至4°保存， 4°冰袋運輸，在保存和運輸過程中樣本和冰袋需間隔，固定液切勿冷凍結冰。

懸浮細菌孢子等：離心收集細菌要肉眼可見細菌沉淀綠豆大小，棄培養基后加電鏡固定液4度避光固定24h，再轉移至4°保存，4°冰袋運輸，在保存和運輸過程中樣本和冰袋需間隔，固定液切勿冷凍結冰。

5、 病毒

破碎組織細胞，粗離心去除細胞碎片取上清，超速離心分離出病毒（病毒提取的過程需要客戶自己完成）。用緩沖液（如PBS）懸浮病毒，體積至少50ul，遠距離干冰凍存運輸，近距離4°保存運輸，盡快滴片做負染后及時電鏡觀察拍照。（噬菌體 4度運輸）

6、 外泌體囊泡等

客戶自己完成外泌體囊泡等的提取收集，用緩沖液（如PBS）或者試劑盒中的保存液懸浮，，體積至少50ul，遠距離干冰凍存運輸，近距離4°保存運輸，盡快制片做負染后及時電鏡觀察拍照。（因此類樣品極易降解，樣品越新鮮越好，最好數小時內完成滴片負染，否則做出的效果很不理想甚至觀察不到）

7、 納米材料等無機材料

直接準備粉劑，或用純水或無水乙醇懸浮，常溫保存運輸即可（需要超聲的備注）。做負染后電鏡觀察拍照。